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ゼラチン・ザイモグラフィーは、電気泳動で分離したサンプル中の MMP-9 (Matrix metalloproteinase-9、マトリックス・メタロプロテアーゼ 9)および MMP-2 のゼラチナーゼ活性を検出する方法です。基質であるゼラチンを含むポリアクリルアミド・ゲルは、クマシー・ブルー染色するとゲル全体が青く染まりますが、ゼラチナーゼ活性がある MMP-9 または MMP-2 が存在する部位のゼラチンは分解され、透明のバンドとして見えるようになります。
これは細胞培養上清をサンプルとして用いた場合の標準プロトコールです。細胞の種類によって個別に条件設定が必要な場合があります。
電気泳動
ゼラチンを含む 7.5 % ポリアクリルアミド・ゲル(厚さ 1 mm)を用意する。ゲルの組成は下のテーブルを参照。
各ウェルにサンプルをロードする(1 レーン当たり 10 μL 程度)。1 レーン分は分子量マーカー用に確保すること。
分離ゲル(7.5 % アクリルアミド) | 濃縮ゲル | ||
1.5 M Tris pH 8.8 | 2 mL | 0.5 M Tris pH 6.8 | 1.25 mL |
30 % アクリルアミド | 2 mL | 30 % アクリルアミド | 0.67 mL |
H2O | 2 mL | H2O | 3.08 mL |
4 mg/mL ゼラチン | 2 mL | 10 % SDS | 50 μL |
10 % SDS | 80 μL | 10 % APS | 50 μL |
10 % APS | 80 μL | TEMED | 10 μL |
TEMED | 10 μL |
ゲルの洗浄と染色
5X 非還元サンプル・バッファー(pH 6.8)
終濃度 | 全量 250 mL |
4 % SDS | 10 g |
20 % グリセロール | 100 % グリセロールを 50 mL |
0.01 % ブロモフェノール・ブルー | 0.025 g |
125 mM Tris-HCl | 4.91 g |
H2O | 200 mL |
終濃度 | 全量 250 mL |
2.5 % Triton X-100 | 100 % Triton X -100 を 6.25 mL |
50 mM Tris-HCl | 1 M ストック溶液を 12.5 mL |
5 mM CaCl2 | 2 M ストック溶液を 625 μL |
1 μM ZnCl2 | 0.1 M ストック溶液を 2.5 μL |
アジ化ナトリウム を含む H2O | 2 % NaN3 2 mL + H2O 228 mL |
終濃度 | 全量 250 mL |
1 % Triton X-100 | 100 % Triton X-100 を 2.5 mL |
50 mM Tris-HCl | 1 M ストック溶液を 12.5 mL |
5 mM CaCl2 | 2 M ストック溶液を 625 μL |
1 µM ZnCl2 | 0.1 M ストック溶液を 2.5 μL |
アジ化ナトリウム を含む H2O | 2 % NaN3 2 mL + H2O 233 mL |
全量 100 mL | |
メタノール | 40 mL |
酢酸 | 10 mL |
H2O | 50 mL |
Coomassie Blue(クマシー・ブルー) | 0.5 g |
全量 1 L | |
メタノール | 400 mL |
酢酸 | 100 mL |
H2O | 500 mL |